Обеззараживание аппаратов ивл. Алгоритм очистки и обеззараживания аппаратов ингаляционного наркоза и искусственной вентиляции легких (ИВЛ) Дезинфекция и стерилизация аппаратов современных ивл

Стерилизация наркозно-дыхательной аппаратуры и инструментов предпринимается для предотвращения инфицирования больных и развития у них инфекционных осложнений. Стерилизацию наркозно-дыхательной аппаратуры и контроль за ее стерильностью должна осуществлять сестра-анестезист. После применения наркозный аппарат и аппарат для искусственной вентиляции легких должны быть вымыты и простерилизованы поблочно или в собранном виде (в зависимости от конструкции). Для мойки элементов и комплектующих деталей применяются смеси, состоящие из 3% раствора перекиси водорода и 0,5% раствора моющих средств "Прогресс", "Астра", "Лотос" или "Триас-А". В эту смесь погружают все узлы и приспособления, составляющие дыхательную систему. Во время механической обработки в этом растворе в течение 15-20 мин при температуре +50°С происходит не только очистка, но и стерилизация всех частей наркозного аппарата и аппарата для искусственной вентиляции легких. Для более надежной стерилизации узлы аппаратов, а также комплектующие детали, эндотрахеальные трубки, трахеостомические канюли, рото- и носоглоточные воздуховоды, лицевые маски и другие приспособления, изготовленные из резины и пластмассы, погружают в один из перечисленных ниже дезинфицирующих растворов:

3% раствор перекиси водорода 60 мин 3% раствор формальдегида 30 мин 1% раствор хлорамина 30 мин 0,1% раствор дезоксона 20 мин

В растворе дезоксона нельзя обрабатывать металлические детали.

В случаях инфицирования аппарата кокковой флорой, устойчивой к антибиотикам, или микобактериями туберкулеза рекомендуется применять один из следующих растворов:

3% раствор перекиси водорода 3 ч 10% раствор формальдегида 60 мин 1% раствор дезоксона 30 мин 5% раствор хлорамина 2 ч

После применения наркозно-дыхательной аппаратуры у больных со столбняком или газовой гангреной проводится стерилизация одним из указанных ниже растворов:

6% раствор перекиси водорода 6 ч 1% раствор дезоксона 45 мин 10% раствор формальдегида 4 ч

После стерилизации необходимо тщательно промыть все детали в стерильной дистиллированной воде. Последующее хранение всех приспособлений и аппаратуры должно осуществляться в асептичных условиях. Если аппарат не собран, то гофрированные шланги, дыхательные мешки и меха хранят в подвешенном состоянии, а приспособления для ларингоскопии и интубации - на стерильных сетках, завернутых в стерильные простыни. Собранные аппараты оборачивают стерильными простынями.

Для стерилизации аппаратов в собранном виде применяют аэрозольную смесь, состоящую из 20% параформальдегида, 30% этилового спирта и 50% фреона-12. Предварительно необходимо разобрать и промыть аппараты теплой водой, а затем после сборки закрытой дыхательной системы ввести в нее 4,5-5 г аэрозоля и включить респиратор на 1,5 ч при минутной вентиляции 20 л. Затем в дыхательную систему несколько раз вводят по 20 мл 23% раствора аммиака в воде для нейтрализации формальдегида. Время нейтрализации составляет 3 ч. После этого открытую дыхательную систему продувают в течение 7 ч. Запах формальдегида должен отсутствовать. Если он сохраняется, то необходима дополнительная нейтрализация. Допустим слабый запах формальдегида или аммиака.

Наружные части аппаратов протирают марлевыми салфетками, смоченными хлорамином. Затем протирают их 1% раствором хлорамина или 3% раствором перекиси водорода с 0,5% раствором одного из моющих поверхностно-активных веществ.

Так же обрабатывают другое анестезиологическое оборудование (столики, тележки, баллоны для газов, которые хранятся в операционном блоке).

Нужно помнить, что пары формалина, выделяющиеся из обеззараживающих растворов, раздражают дыхательные пути и могут вызвать отравление, поэтому необходимо соблюдать следующие меры предосторожности:

1. Комната, в которой проводится стерилизация, должна быть просторной, хорошо проветриваться и находиться вдали от палат и помещений, где могут быть люди.

2. В помещении, где проводится стерилизация, не должно быть людей, за исключением тех, кто проводит стерилизацию. Время нахождения в этом помещении должно быть максимально ограничено. После помещения частей наркозно-дыхательной аппаратуры в емкости с антисептическим раствором (а при стерилизации аппаратов в собранном виде - после введения аэрозоля и включения аппарата) персонал должен покинуть помещение на все время стерилизации.

3. Во время промывки и стерилизации наркозно-дыхательной аппаратуры сестра и санитарка должны обязательно работать в резиновых перчатках.

Эндотрахеальные трубки можно стерилизовать кипячением в течение 2-3 мин. Предварительно трубку необходимо тщательно промыть в теплой воде с мылом или синтетическим моющим средством. Для мытья внутренней поверхности используют ершик.

Клинки ларингоскопов обмывают теплой водой с мылом, а затем протирают салфеткой, смоченной в спирте. Можно воспользоваться также 3% раствором перекиси водорода, 3% раствором формальдегида или 1% раствором хлорамина. Применять раствор дезоксона нельзя. После стерилизации клинок необходимо хорошо промыть водой.

Шпрей (пульверизатор) обмывают снаружи и протирают спиртом.

Подробная инструкция по обеззараживанию (стерилизации), мойке и чистке наркозной и дыхательной аппаратуры имеется в приложении № 4 к приказу министра здравоохранения СССР № 720 от 31 июля 1978 г.

Одной из сложнейших задач неонатологии - предупреждение инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи, в отделениях реанимации и интенсивной терапии (ОРИТ) при выхаживании недоношенных новорожденных с экстремально низкой и очень низкой массой тела. Оказание медицинской помощи данному контингенту пациентов требует высокой ответственности медицинского персонала ОРИТ по соблюдению принципов асептики и антисептики при проведении манипуляций, связанных с нарушением целостности кожных покровов и слизистых оболочек. В статье обсуждаются методики обработки кувезов и наркозно-дыхательной аппаратуры, как многокомпонентного оборудования, содержащего синтетические материалы, требующих деликатных методов обеззараживания, и даются рекомендации по их применению с учетом требований нормативных документов и накопленного практического опыта.

стерилизация

дезинфекция

наркозно-дыхательная аппаратура

недоношенные новорожденные

отделение реанимации и интенсивной терапии

связанные с оказанием медицинской помощи

инфекции

1. Брусина Е.Б. Теоретические, методические и организационные основы эпидемиологического надзора за госпитальными гнойно-септическими инфекциями в хирургии (эпидемиологические, клинические, и микробиологические исследования): Автореф. дисс. док. мед. наук. – Омск, 1996. - 46 с.

2. Брусина Е.Б. Эпидемиология инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи в отделениях реанимации и интенсивной терапии // Главная медицинская сестра. - 2014. - № 2. – С. 49–55.

3. Детские болезни. Учебник. Т. 1. Неонатология / Под ред. Н.Н. Володина, Ю.Г. Мухиной, Ю.Г. Чубаровой. – М., 2011.

4. Методические указания по дезинфекции кувезов для недоношенных детей. Приложение № 7 к приказу МЗ СССР № 440 от 20.04.1983 г. - М., 1983.

5. Неонаталогия. Национальное руководство. Краткое издание. / Под ред. акад. РАМН Н.Н. Володина. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2013.

6. Парыгина О.Н. О совершенствовании системы эпидемиологического контроля инфекционной заболеваемости новорожденных в стационарах второго этапа выхаживания / Парыгина О.Н., Обухова Т.М., Турчанинов Д.В. // Современные проблемы науки и образования. - 2011. - № 6. - С. 5.

7. Покровский В.И., Акимкин В.Г., Брико Н.И. и др. Национальная концепция профилактики инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи, утв. 06.11.2011. – Н.Новгород, 2012. - 84 с.

8. Приказ МЗ СССР № 720 «Об улучшении медицинской помощи больным с гнойно-хирургическими заболеваниями и усилении мероприятий по борьбе с внутрибольничной инфекцией» от 31.07.1978 г. - М., 1978.

9. Ракитин А.В. Оценка эффективности и качества дезинфекционных и стерилизационных мероприятий в системе эпидемиологического надзора за госпитальными гнойно-септическими инфекциями в акушерских стационарах: Автореф. дисс. канд. мед. наук. – Омск, 2000. - 19 с.

10. СанПиН 2.1.3.2630-10 Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность. – М., 2010.

11. СанПиН 2.1.7.2790-10 Санитарно-эпидемиологические требования к обращению с медицинскими отходами. – М., 2010.

12. Сестринский уход и интенсивная терапия в неонатологии. Сб. материалов для медицинских сестер отделения новорожденных: Методические указания / Под ред. Пшеничникова В.К. - СПб.: ООО «Береста», 2013. – С. 296.

13. Стасенко В.Л. Научные, методические и организационные основы профилактики внутрибольничных инфекций в стационарах для новорожденных детей (второй этап выхаживания): Автореф. дисс. докт. мед. наук. – Омск, 2004. - 39 с.

14. Шандала М.Г., Алёшкин В.А., Селькова Е.П., Пантелеева Л.Г. и др. Эпидемиологические и дезинфектологические обоснования рационального выбора методов, средств и режимов дезинфекции и стерилизации в лечебно-профилактических учреждениях: Рекомендации для медицинских работников. – М., 2006. - 38 с.

15. Шестопалов Н.В., Пантелеева Л.Г., Соколова Н.Ф., Абрамова И.М., Лукичев С.П. Федеральные клинические рекомендации по выбору химических средств дезинфекции и стерилизации для использования в медицинских организациях. – М., 2015. - 56 с.

В Национальной концепции профилактики инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи, большое значение придается совершенствованию дезинфекционно-стерилизационных мероприятий в медицинских организациях, в том числе в неонатологии . Прошло более 30 лет с момента выхода приказов МЗ СССР, которыми регламентированы методы и средства обеззараживания кувезов , обеззараживания и стерилизации аппаратов искусственной вентиляции легких . С 1980-х гг. значительно пополнился перечень средства дезинфекции, введены новые методики химической деконтаминации медицинских изделий: дезинфекция высокого уровня, совмещение дезинфекции и предстерилизационной очистки в один этап, широкое использование ультразвуковых установок для повышения качества очистки от биологической и механической нагрузки, для дезинфекции медицинских изделий . Естественно, новые требования и технологии нашли свое применение и в неонатологии. Современные условия требуют новых походов к проведению дезинфекционных мероприятий, что нашло свое отражение в Санитарных правилах .

С переходом России на новые критерии жизнеспособности плода, принятые ВОЗ (вес недоношенного новорожденного от 500 г), резко увеличилось количество недоношенных малышей с экстремально низкой массой тела (ЭНМТ) и очень низкой массой тела (ОНМТ), что потребовало разработки высоких технологий по их выхаживанию, создания перинатальных центров, оснащения отделений реанимации и интенсивной терапии новорожденных (ОРИТН) и патологии новорожденных и недоношенных (ОПНН) перинатального центра для оказания высококвалифицированной специализированной медицинской помощи, а в роддомах - палат интенсивной терапии . Организм даже здорового доношенного новорожденного ребенка проходит период адаптации к внеутробной жизни. У недоношенного ребенка глубоко незрелый организм не готов пережить этот кризис, т.е. не готов к адаптации в условиях внеутробной жизни, и нуждается в поддержании функций. В этот период многое зависит от профессионализма и четкости действий медицинского персонала. Первичная реанимационная помощь может оказываться уже в родильном зале: 5-6% новорожденных нуждаются в санации верхних дыхательных путей и дополнительном снабжении кислородом. Поэтому первоочередной задачей является проведение реанимационных мероприятий, позволяющих обеспечить жизнедеятельность организма. При выполнении вышеуказанных процедур применяются стерильные изделия, преимущественно однократного применения, медицинский персонал проводит процедуры в асептических условиях - подготовленное помещение, стерильные халат, маска, салфетки, простыни, ватно-марлевые изделия, антисептическая обработка рук и использование разовых стерильных перчаток, очков для защиты глаз .

Для проведения инвазивных манипуляций в учреждениях должны быть разработаны стандарты на выполнение каждой процедуры, которые должны персоналом строго выполняться . Все процедуры проводят с соблюдением принципов асептики и антисептики. Изделия однократного применения, в том числе одежда персонала, использованные белье, марлевые изделия, после процедур подвергают дезинфекции как медицинские отходы класса Б , а изделия многократного использования подвергают дезинфекции по противовирусному режиму, эффективному при парентеральных вирусных гепатитах (В, С) .

По данным Е.Б. Брусиной , частота инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи (ИСМП), в ОРИТ достигает 230 случаев на 1000 новорожденных. Инфекции вызваны условно-патогенной и патогенной микрофлорой в период пребывания в ОРИТ. Высокий риск присоединения ИСМП в ОРИТН определяется особенностями лечебно-диагностического процесса, связанными с искусственной вентиляцией легких (ИВЛ), массивной инфузионной терапией, сосудистыми эксплантантами и др. По мнению автора, факторами риска для новорожденных являются: полиорганная недостаточность, иммунодефицит, экстремально низкая масса тела, респираторный дистресс-синдром и др. Основные типы инфекции в ОРИТ определяют: пневмония (27,0 на 1000 дней вентиляции), инфекция кровотока (12,5 случаев на 1000 дней внутривенной катетеризации) и инфекция мочевыводящих путей (8,9 на 1000 дней мочевой катетеризации). Поэтому считаем необходимым обсудить особенности обработки кувезов и наркозно-дыхательных аппаратов.

Материалы и методы

На основании данных нормативной документации и литературы, а также материалов собственных исследований проведены анализ и обобщение сведений о методиках, режимах дезинфекции и стерилизации наркозно-дыхательной аппаратуры, кувезов в ОРИТ при оказании медицинской помощи недоношенным новорожденным с экстремально низкой и очень низкой массой тела.

Результаты и их обсуждение

Дезинфекция кувезов. Обработку кувезов и приспособлений к ним проводят в отдельном специально выделенном асептическом помещении в отсутствие детей, после перевода новорожденного или не реже 1 раза в 7 дней. При обработке кувезов следует учитывать рекомендации производителя (документацию по эксплуатации кувеза, прилагаемую к конкретной модели) . Однако отечественные и зарубежные ученые и действующие санитарные правила рекомендуют смену кувезов проводить через каждые 3 суток пребывания ребенка . Поверхности кувеза и его приспособления после пребывания ребенка в нем подвергаются дезинфекции по типу заключительной. Рекомендуется дезинфекцию кувезов проводить в отдельном хорошо проветриваемом помещении, оснащенном стационарными бактерицидными ультрафиолетовыми облучателями (УФО) и передвижной УФ-установкой. Перед обеззараживанием медперсонал надевает чистый халат, маску и стерильные резиновые печатки .

Перед обработкой кувеза его необходимо выключить, опорожнить водяной бачок увлажнителя, в случаях, предусмотренных инструкцией по эксплуатации кувеза, поменять фильтры отверстия кабины, через которое в кувез поступает воздух. Дезинфекцию кувезов проводят дезинфицирующими средствами, в инструкциях по применению которых есть рекомендации по обеззараживанию кувезов .

В соответствии с современными нормативными документами дезинфекцию внутренних поверхностей кувезов проводят способом протирания, различных приспособлений - погружением в растворы дезинфицирующих средств по режимам (концентрация раствора, время дезинфекционной выдержки), рекомендованным для профилактики и борьбы с бактериальными, вирусными и грибковыми инфекциями, выбирая из них наиболее жесткий для данного средства - более высокие концентрации рабочих растворов и более длительное время обеззараживания . При обработке используют стерильную ветошь. Ветошь смачивают дезинфицирующим раствором и тщательно дважды через 15 мин протирают внутренние поверхности кувеза, матрасик, а затем наружные поверхности. Крышку кувеза закрывают и открывают через 1 ч.

После дезинфекции кувеза остатки дезинфицирующего раствора следует удалить многократным (не менее 2 раз) смыванием (протиранием) стерильными салфетками или стерильной пеленкой, обильно смоченными стерильной водой (100-150 мл/м²). После каждого смывания необходимо поверхности вытирать насухо. По окончании влажной обработки кувезы следует проветрить в течение времени, рекомендованного инструкцией к используемому средству.

Внутренние поверхности кувеза могут подвергаться ультрафиолетовому облучению (при устойчивости материалов кувеза к действию УФО). Включают бактерицидную лампу, располагая ее на расстоянии 0,5-1 м так, чтобы пучок света перпендикулярно падал в камеру открытого кувеза. Проветривание и облучение продолжаются 30-60 мин. Закончив обработку, кувез закрывают, включают аппарат и выдерживают в течение 2-5 ч. Обработанные кувезы хранят в асептических условиях. Перед тем как поместить ребенка, увлажняющую систему кувеза заливают стерильной дистиллированной (очищенной) водой.

Для дезинфекционной обработки применяют средства, позволяющие совмещать дезинфекцию с очисткой в одном этапе по наиболее эффективному режиму по вышеизложенным критериям . При туберкулезе новорожденного выбирают дезсредства, эффективность которых тестирована на Mycobacterium terrae, о чем содержится информация в инструкции на средство .

Используемые средства должны пройти разрешительную систему и иметь соответствующую документацию. При выборе дезсредства следует в целях исключения их вредного воздействия на медицинское изделие руководствоваться рекомендациями производителей этих изделий о совместимости конкретных дезсредств с материалами, использованными при изготовлении этих изделий. Современными являются средства на основе третичных алкиламинов, перекиси водорода и их композиционные препараты, обладающие антимикробными и моющими свойствами, которые позволяют совмещать дезинфекцию с очисткой в единый процесс. Препараты на основе перекиси водорода не оставляют на синтетических материалах кувезов следов. Эти две группы эффективных средств позволяют проводить их ротацию для предупреждения развития резистентности бактерий к действию химических дезинфекционных средств .

Для дезинфекции кувезов не допускается применение хлорактивныхсредств, а также средств, содержащих в своем составе альдегиды, фенол и его производные . Не рекомендуются средства на основе гуанидинов, четвертичных аммониевых соединений (ЧАС), спиртов и в составе различных сочетаний из-за способности проявлять фиксирующее действие и образовывать пленки .

Рабочий раствор дезсредства применяют в концентрации и с экспозицией в соответствии с режимом по методическим рекомендациям или инструкции на используемое средство. Норма расхода средства - 100-150 мл рабочего раствора на 1 м² обрабатываемой поверхности.

Приспособления (резервуар увлажнителя, металлический волногаситель, воздухозаборные трубки, шланги, узел подготовки кислорода) полностью погружают в емкость с рабочим раствором дезсредства на время, указанное в инструкции на средство. После окончания дезинфекции все приспособления промывают путем двукратного погружения в стерильную воду по 3-5 мин каждое, прокачав стерильную воду через трубки и шланги. Приспособления высушивают с помощью стерильных тканевых салфеток.

Необходимо строго соблюдать последовательность всех этапов обеззараживания и последующей обработки кувеза, точно выполнять сроки экспозиции и проветривания.

При низкой эффективности проводимых дезинфекционных мероприятий по изложенным методикам разрешенными средствами (при высеве условно-патогенной микрофлоры после обработки) обеззараживание проводят с применением 6%-ного раствора перекиси водорода и экспозиции 60 мин.

Дезинфекцию наружных поверхностей кувезовс целью профилактики ИСМП осуществляют ежедневно одновременно с проведением текущих уборок по режиму, обеспечивающему гибель грамотрицательных и грамположительных бактерий (по режиму бактериальных инфекций) с последующим удалением средства стерильными тканевыми салфетками (ветошью), обильно смоченными стерильной питьевой водой, затем насухо вытирают стерильной пеленкой (ветошью).

Обработка анестезиологического инструмента. После окончания оказания помощи пациенту, не позволяя высохнуть биологическим загрязнениям, весь (ларингоскоп, роторасширитель, языкодержатель, мандрен для эндотрахеальных трубок, пинцет и др.) инструмент, соприкасающийся со слизистыми, подвергают предварительной очистке в слабом растворе моюще-дезинфицирующего средства с использованием салфеток для удаления видимых загрязнений, которые обеззараживают как отходы класса Б , затем погружают в рабочий раствор дезсредства, позволяющего совмещать дезинфекцию с предстерилизационной очисткой в один этап. Отмывают от дезсредства проточной водопроводной водой, затем дистиллированной в соответствии с инструкцией на средство. Соблюдают алгоритм такой процедуры. После этого такой инструмент подвергают дезинфекции высокого уровня или стерилизации в средствах, разрешенных для этих целей .

Режимы обработки наркозно-дыхательной аппаратуры. Дезинфекцию наркозно-дыхательной аппаратуры и приспособлений к ней осуществляют в соответствии с рекомендациями, изложенными в «Инструкции по очистке (мойке) и обеззараживанию аппаратов ингаляционного наркоза и искусственной вентиляции легких» рабочими растворами средств, официально разрешенных для этих целей .

В исследованиях было показано, что компоненты аппаратов ИВЛ значительно контаминируются условно-патогенной микрофлорой. В структуре микрофлоры, выделенной с аппаратов ИВЛ, преобладали бактерии рода Pseudomonas, на долю которых приходилось 62,9%. Более половины всех выделенных возбудителей составили синегнойная палочка - 55,7%, бактерии рода Acinetobacter (9,1%), Staphylococcus aureus (10%) и Enterobacter (8,6%).

Наибольшая обсемененность отмечалась в увлажнителе - 89,4 случаев, а сборнике конденсата - 84,1 случаев на 1000 исследований проб. Коннекторы, адаптеры, тройники были обсеменены в 51,7 случаев на 1000. Интенсивно загрязняются клапаны вдоха (46,4%) и выдоха (70,9%).

Для обработки деталей, комплектующих аппараты (масок, шлангов, ротоглоточных воздуховодов, дыхательных мешков), в соматических стационарах с целью профилактики гнойно-септических инфекций, ВИЧ-инфекции, гепатитов В (ВГВ) и С (ВГС), цитомегаловирусной инфекции (ЦМВ) и иного рекомендуется режим обеззараживания по гепатиту В, эффективный как при бактериальных (исключая туберкулез), так и вирусных инфекциях, передающихся артифициальным, контактным путями . При оказании помощи в противотуберкулезных учреждениях пациенту с туберкулезом применяется соответствующий режим дезинфекции при туберкулезе дезсредствами, тестированными на Mycobacteria terrae .

Использование режима обработки комплектующих деталей наркозно-дыхательной аппаратуры моюще-дезинфицирующими растворами значительно сократит общее время обработки, объединив очистку и дезинфекцию в один процесс. Указанные режимы в равной степени эффективны в отношении возбудителей гнойно-септических, вирусных инфекций (ВГВ и ВГС), кандидозов, туберкулеза, за исключением заболеваний, вызванных спорообразующими бактериями (столбняк, газовая, анаэробная инфекция).

Алгоритм обработки:

1) разборка узлов, снятие шлангов, присоединительных элементов, крышек клапанных коробок, отсоединение и опорожнение сборников конденсата и т.п.;

2) предварительная очистка для удаления биологических и других загрязнений путем протирания салфетками с использованием слабого раствора дезинфицирующего средства, разрешенного для этих целей, в режиме предстерилизационной очистки; промывание внутренних каналов этим же раствором либо промывание в емкости с водопроводной водой сразу же после окончания работы. Салфетки, промывные воды обеззараживают по режиму медотходов класса Б ;

3) дезинфекция по режиму ВГВ - при оказании помощи новорожденному; по режиму туберкулеза - при оказании помощи больному туберкулезом с применением разрешенных средств. Разрешено применять средства, позволяющие совмещать дезинфекцию с очисткой в едином процессе;

4) отмывание водопроводной водой от остатков дезсредства;

5) окончательная очистка изделий (с соблюдением алгоритма и методики предстерилизационной очистки по ОСТ 42-21-2-85) проводится с использованием средств, разрешенных только для этих целей.

6) ополаскивание водопроводной водой;

7) ополаскивание в дистиллированной (очищенной) воде в двух емкостях;

8) сушка деталей в стерильной простыне, салфетками и хранение в асептических условиях;

9) стерилизация комплектующих деталей химическим методом;

10) стерилизации подвергают аппараты ИН, ИВЛ в собранном виде растворами формальдегида в этиловом спирте по методике, изложенной в приказе (приложение 4 п. 4) или иным способом, официально разрешенным.

Для обеззараживания комплектующих деталей ИВЛ-аппаратуры при инфекционных заболеваниях, вызванных спорообразующими бактериями (столбняк, анаэробная инфекция, Clostridium difficile), применяют растворы средств, обладающих стерилизующим эффектом, в концентрации и экспозиции, как при стерилизации изделий . При этом соблюдается вышеуказанный алгоритм обработки. Средства, режимы и методы обеззараживания приведены в инструкциях на дезсредства, официально разрешенные для применения с этой целью.

Средства предварительной очистки, средства и методы обеззараживания смывных вод приводятся как медотходов класса Б .

Алгоритм обработки интубационных трубок, катетеров для санации трахеобронхиального дерева, зондов включает несколько этапов.

1. Предварительная очистка от биологических (крови, слизи) и других загрязнений с применением низких концентраций разрешенных растворов дезинфектантов (в режиме ПСО) или воды с использованием салфеток; путем пропускания через каналы, полости дезраствора (шприцем) и полного погружения в раствор с заполнением каналов. Смывную жидкость, салфетки подвергают обеззараживанию по режиму ВГВ (медотходы класса Б) или туберкулеза и кандидозов (медотходы класса В) .

2. Дезинфекция изделий по режиму вирусного гепатита В или туберкулеза, кандидозов путем погружения в раствор дезинфицирующего средства, разрешенного для этих целей.

3. Отмывание водопроводной водой от остатков дезсредств.

4. Основная очистка - предстерилизационная очистка изделий. Режимы, методы приведены в инструкциях, методических указаниях на средства, разрешенные для этих целей. Строго соблюдают концентрацию средства и время выдержки.

5. Отмывание водопроводной водой, затем водой, очищенной от остатков моющего средства, в течение времени согласно инструкции.

6. Сушка изделий.

7. Стерилизация химическим методом в асептических условиях путем полного погружения изделий и заполнения каналов растворами средств, официально разрешенных для этих целей. Санитарными правилами разрешены: кислородсодержащие, альдегидсодержащие соединения, анолит АНК, нейтральный анолит. Емкости для стерилянта и стерильной воды для отмывания стерилизуют паровым методом при давлении 2,0±0,2 кгс/см², температуре 132±2ºС в течение 20+2 мин или при давлении 2,1±0,1 кгс/см², температуре 134±1ºС в течение 5+1 мин . Возможно применение газового, плазменного метода стерилизации при наличии соответствующих аппаратов . В настоящее время переходят на изделия разового пользования, поставляемые стерильными медицинской промышленностью.

8. Отмывание от раствора стерилянта в стерильной жидкости в асептических условиях. Методика и время даны в инструкции, методических указаниях на каждое средство.

9. Высушивание поверхностей изделий в стерильных салфетках, простынях, внутренних каналов стерильным воздухом с применением воздушного насоса или стерильного шприца. Упаковка в стерильные простыни, хранение в стерильном биксе с фильтром не более 72 ч. Маски, изготовленные из термоустойчивого материала, стерилизуют паровым методом по режиму при 121±1ºС (давление 1,1+0,1 кгс/см 2) в течение 20 мин или при температуре 134±1ºС и экспозиции 5+1 мин.

Обработка аппаратов искусственной вентиляции легких весьма трудоемка, поскольку применяются разнородные материалы. В настоящее время в неонатологии используется принцип замены разовых блоков контуров и комплектующих деталей из резины после каждого пациента на аналогичные стерильные изделия промышленного производства.

В 1980-1990-х гг. при преобладании хлорамина и перекиси водорода мы в натурных опытах использовали для обработки внешней среды, медицинских изделий, аппаратов ИВЛ при контаминации синегнойной палочкой двойное обеззараживание, сначала 1-2%-ным раствором борной кислоты - расщепление и удаление слизистой оболочки, затем основную дезинфекцию - 1%-ным раствором хлорамина .

При инфицировании Klebsiella pneumonia в опытах с той же целью использовали тоже метод двойного обеззараживания: сначала обрабатывали 0,25%-ным раствором уксусной кислоты, затем 1%-ным раствором хлорамина. Анализ наших данных свидетельствует, что соотношение естественной устойчивости к хлорамину по минимальной ингибирующей концентрации у клебсиеллы пневмонии, синегнойной палочки, эпидермального стафилококка к патогенному стафилококку, фекальному стрептококку, кишечной палочке имели следующие значения: 3:4,7:1,8:1. Эти факты послужили основой для дифференцированного проведения дезинфекционных мероприятий от вышеуказанных микробных факторов при осложнении эпидемиологической ситуации в стационаре .

Выводы

Таким образом, методика очистки и обеззараживания кувезов сохраняется, но предложено использовать современные дезсредства, а режимы использования средств дезинфекции ужесточаются.

В отношении использования аппаратов искусственной вентиляции легких предпочтительнее переход на разовые стерильные блоки контуров и комплектующие детали.

Библиографическая ссылка

Предлагаем вашему вниманию журналы, издающиеся в издательстве «Академия Естествознания»

Технологический процесс обработки изделий, аппаратов и оборудования медназначения регламентирован требованиями главы II СанПиН 2.1.3.2630-10 "Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность" и включает последовательное проведение этапов:

• дезинфекции;
• стерилизации.

Обработка и стерилизация наркозно-дыхательной аппаратуры

Алгоритм действий таков:

1. Обеззараживание наркозно-дыхательных аппаратов (далее НДА), в соответствии с требованиями п. 2.7 главы II и п.6.6 главы III CанПиН 2.1.3.2630-10 проводят с учетом рекомендаций, изложенных в руководстве по эксплуатации аппарата конкретной модели (см. материалы в ЭС «Контроль в ЛПУ» - ).
2. Съемные детали НДА дезинфицируют как медизделия с учетом особенностей воздействия химических и физических агентов на материалы из которых изготовлены детали, методами и способами утвержденными МУ МЗ РФ от 30.12.1998г. № 287-113 "Методические указания по дезинфекции, изделий медицинского назначения"
3. В отношении обработки дыхательных контуров, требованиями СанПиН 2.1.3.2630-10 рекомендуется использование контуров однократного применения в течение не более 72 часов для каждого пациента, если иное не предусмотрено производителем.

Обработка изделий, не контактирующих с раневой поверхностью, кровью, слизистой

Кровью (в организме пациента или вводимой в него) и/или инъекционными препаратами и не соприкасающиеся со слизистой оболочкой в процессе эксплуатации, согласно п.2.15 главы II CанПиН 2.1.3.2630-10, стерилизации не подлежат. Исключение представляют случаи, указанные производителем в эксплуатационной документации НДА.

Условия хранения

Условия хранения (упаковка и сроки) зависят от применяемого в организации метода стерилизации. Допускается хранение не более 3 суток в стерильной стерилизационной коробке, выложенной стерильной простыней.

Установка фильтров, съемных деталей аппарата

Заполнение резервуаров увлажнителей стерильной дистиллированной водой, установка фильтров, съемных деталей осуществляют при подготовке НДА к использованию, в соответствии с инструкцией по применению (обращая внимание на количество указанных изготовителем циклов обработки).

Как производится обработка аппликаторов(пластик) и насадок к аппарату низкочастотной ультразвуковой обработки для обработки дыхательной системы?

Медицинские изделия многократного применения, контактирующие с раневой поверхностью, кровью и/или инъекционными препаратами, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждения, в соответствии с установленными разделом II СанПиН 2.1.3.2630-10 требованиями и с учетом рекомендаций изготовителей изделий медицинского назначения.

Выбор адекватных методов и способов дезинфекции и стерилизации зависит от особенностей стерилизуемых изделий (материал изготовления и его свойства):

• допускается применять дезинфекцию способом протирания для тех изделий медицинского назначения, конструкционные особенности которых не позволяют применять способ погружения;
• дезинфицируют и стерилизуют физическим (кипячение, пар) или химическим методом (погружение в дезинфицирующий раствор, стерилянт) изделия из резин, латекса и отдельных видов пластмасс;
• стерилизуют воздушным методом изделия из силиконовой резины, обязательно высушивая в сушильном шкафу при температуре 850С до исчезновения видимой влаги после предстерилизационной очистки;
• стерилизуют с применением растворов химических средств изделия, в конструкции которых использованы термолабильные материалы, используя для этих целей растворы альдегидсодержащих, кислородсодержащих и некоторых хлорсодержащих средств, проявляющих спороцидное действие.

В соответствии с установленными п. 1.2 и п.1.4 ОСТ 42-21-2-85 "Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы", в эксплуатационной документации к изделию должны описываться методы, средства и режимы предстерилизационной очистки, стерилизации и дезинфекции применительно к изделию или группам изделий с учетом их назначения, конструктивных особенностей, а также указываться требования их устойчивости к средствам предстерилизационной очистки, стерилизации и дезинфекции.

Т.е. в инструкции изготовителя по применению медицинского аппарата в обязательном порядке должны быть указаны и описаны последовательность проводимых процедур обработки медицинского аппарата и каждого, входящего в его комплектацию изделия и инструмента либо их перечислением, в случае, если методы дезинфекции и стерилизации для них однотипны.

Должны ли быть стерильными дыхательные контуры аппарата исксственной вентиляции легких

Типы аппаратов ИВЛ, модификации дыхательных контуров зависят от функционального назначения, конструкционных особенностей, воспринимаемых внешних воздействий, режима работы потенциального риска.

Изготовитель обязан в сопроводительной документации к оборудованию:

1. дать объяснение по IP-классификации значений, маркированных на медицинских изделиях, и предназначение аппарата ИВЛ – для неинвазивной (подача кислорода с помощью маски) или инвазивной (интубирование) вентиляции легких;
2. привести требования к принадлежностям, поставляемым отдельно, с указанием любых ограничений или негативного влияния, их основные функциональные характеристики и уровень безопасности;
3. указать на предназначение принадлежностей, поставляемых с аппаратом, – одноразового пользования или подлежат повторной обработке;
4. указать, какая часть дыхательного контура аппарата ИВЛ загрязняется жидкостями тела и выдыхаемыми газами, и факторы риска при повторном применении аппарата и принадлежностей;
5. привести методы очистки, дезинфекции и стерилизации в случае повторной обработки принадлежностей и риска их повторного применения.

Если аппарат, его части и принадлежности предполагается применять к детям, беременным или кормящим женщинам, инструкция по эксплуатации должна содержать информацию по остаточным рискам и мерам предосторожности для указанной группы пациентов.

Дыхательный контур к аппарату ИВЛ может состоять из трубок и соединительных деталей и включать дополнительные приспособления: увлажнители, газовые анализаторы, спирометры.

На упаковке дыхательного контура изготовителем изделия в соответствии с ГОСТ Р 51528-99 «Системы ингаляционного наркоза. Часть 2. Анестезиологические циркуляционные дыхательные контуры» должно быть указано:

• это изделие однократного применения или подлежит повторной обработке;
• методы и способы обработки;
• количество циклов повторной обработки;
• методы контроля безопасности при повторном применении.

Внимание: при применении бактериального фильтра в технических условиях по эксплуатации аппарата ИВЛ должно быть указано, что дыхательный фильтр «Не подлежит стерилизации».

Инструкция по повторной обработке должна соответствовать ГОСТ 17664-2012 «Стерилизация медицинских изделий информация, предоставляемая изготовителем для проведения повторной стерилизации медицинских изделий» . В зависимости от предназначения аппарата искусственной вентиляции легких – для неинвазивной или инвазивной вентиляции легких – и возможного риска при их повторном применении:

• требуется дезинфекция, ПСО и стерилизация контура;
• достаточно его дезинфекции.

Указанные в руководстве по эксплуатации методы и режимы стерилизации должны соответствовать МУ 287-113 и ОСТ 42-21-2-85:

• при стерилизации методом автоклавирования режим не должен быть ниже 110°C;
• при стерилизации химическим методом вода для промывания дыхательных контуров должна быть стерильной.

Как обрабатывать мешок дыхательный реанимационный по типу Амбу, бокс, в котором он хранится, и реанимационные маски

Многоразовые дыхательный мешок, дыхательные шланги, маски – изделия, не соприкасающиеся со слизистыми пациентов, поэтому после использования и отсоединения от аппарата подлежат очистке, дезинфекции, просушиванию и хранению в условиях, исключающих их вторичную контаминацию.

Обеззараживание наркозно-дыхательных аппаратов и съемных деталей к ним проводят с учетом рекомендаций, изложенных в руководстве по эксплуатации аппарата конкретной модели. Для каждого типа аппарата, съемных деталей к нему изготовитель указывает конкретные методы, способы и режимы обработки.

При выборе режима дезинфекции отдают предпочтение режимам по наиболее устойчивым микроорганизмам между вирусами или грибами рода Кандида.

При изделие (мешок) подлежит:

1. Предварительной очистке и промыванию методом полного погружения в раствор моющего средства с щелочным значением рН (вирус гепатита В разрушается в щелочной среде и не чувствителен к кислым значениям pH). Внутренние поверхности должны быть заполнены моющим раствором полностью. Для отмывания внутренних поверхностей мешок необходимо встряхнуть несколько раз.
2. Отмыванию от остатков моющего средства в проточной воде.
3. Погружению и выдержке в растворе кислородсодержащего средства (в соответствии с рекомендациями изготовителя изделия и инструкцией по применению конкретного дезсредства).
4. Отмыванию. Для сохранения функциональности и сроков эксплуатации изделий для заключительную промывку лучше проводить подготовленной водой (фильтрованной, дистиллированной).

При использовании автоклавирования изделия (маски, шланги) подлежат:

1. Промыванию под проточной водой.
2. Просушиванию. Сушку изделий из термостойких материалов (латекс, силикон) проводят в соответствии с режимом, указанным в инструкции по их применению. Предпочтительна сушка в сушильном шкафу при температуре 85°C до исчезновения видимой влаги.

Для сушки изделий из резины, латекса на основе каучука рекомендуется диапазон температур 70–80°C, так как более высокие температуры значительно сокращают их срок службы. Просушивание шлангов и дыхательного мешка в подвешенном состоянии применимо, если никакой другой способ невозможен и при обязательном соблюдении асептических условий.

1. Упаковке.
2. Автоклавированию в режиме, указанном изготовителем.

Хранят изделия в биксе с фильтром, в котором проводилось автоклавирование, не более 72 часов. Мешок хранят в стерильной простыне, пеленки – в боксе, входящем в комплект для хранения, в течение 24 часов (при отсутствии фильтра).

Во время наркоза и искусственной вентиляции легких вместе с выдыхаемым воздухом в аппарат поступает микрофлора из легких и полости рта больного. Больше всего микробов скапливается в шлангах вдоха и выдоха, в сборнике конденсата, который является «рассадником» микробов, в патрубке выдоха и в увлажнителе. Чаще всего обнаруживаются кишечная и синегнойная палочки, протей, различная кокковая флора, в том числе гемолитический и негемолитический стафилококк.

Заражение по схеме- больной- аппарат- больной считается одной из главных причин послеоперационных пневмоний, и поэтому стерилизацию наркозной дыхательной аппаратуры надо расценивать как важный элемент борьбы с госпитальной инфекцией. Следует придавать особое значение механической очистке узлов этих аппаратов, причем ее надо проводить как можно раньше после окончания наркоза или ИВЛ. Отмывание просвета шлангов до высыхания содержимого снижает бактериальную загрязненность аппаратуры, а оставление ее грязной способствует размножению микробов в мокроте, осевшей внутри аппарата. Чем позднее приступают к промыванию шлангов других узлов аппаратуры, тем труднее добиться хорошей механической очистки их. При обеззараживании наркозной дыхательной аппаратуры возникают две проблемы: выбор метода стерилизации и сохранение стерильности аппаратов до их использования. Вторая проблема решается просто: простерилизованный аппарат накрывают стерильной простыней или пластиком. Трубки для интубации кипятят перед использованием или хранят стерильными в асептическом растворе: 6% раствор перекиси водорода, 96% спирте. Наркозные и дыхательные аппараты разбирают на основные узлы, которые стерилизуют после тщательного промывания.

Обеззараживание аппаратов для ингаляционного наркоза и искусственной вентиляции легких слагаются из 7 этапов:

1. предварительное промывание в течение 5 мин. под струей холодной, затем теплой и горячей воды как можно раньше после использования аппарата.

2. замачивание, т.е. погружение полностью с заполнением всех полостей обрабатываемых деталей в бачок, раковину или ванну, наполненные моющим раствором (температура 50 градусов) на 15-20 мин.

3. мытье каждой детали при помощи ерша или ватно- марлевого тампона в течение 30-45 мин.

4. прополаскивание. Вначале каждую деталь прополаскивают проточной водой: при использовании моющего раствора в течение 3-5 мин., затем ополаскивают в дистиллированной воде 30 секунд.

5. сушка горячим воздухом в сушильном шкафу при температуре 85 градусов до исчезновения влаги. При отсутствии сушильного шкафа просушивание проводится стерильным полотенцем.

6. холодная стерилизация узлов, не подлежащих термической обработке. Погружение в один из антисептических растворов: 3-6 % раствор перекиси водорода (при температуре 40-50градусов) на 60 мин. металлические детали стерилизуют кипячением или автоклавированием.

7. отмывание деталей стерильной водой и просушивание в асептических условиях (завернутыми в стерильное полотенце) в сушильном шкафу.

Следует отдавать предпочтение холодной стерилизации 3 или 6% раствором перекиси водорода, увеличивая при сильном загрязнении аппарата экспозицию до 3 часов.

Стерилизация аппаратов искусственного кровообращения и искусственной почки .

Эффективность стерилизации аппаратов искусственного кровообращения (АИК) и искусственной почки во многом зависит от качества предстерилизационной очистки, которая должна начаться тотчас после окончания работы аппарата. Особое внимание уделяется тщательному отмыванию от крови всех трубок и узлов аппаратов, соприкасавшихся с кровью. Эта процедура проводится по принципам, описанным выше. Полихлорвиниловые и другие трубки лучше всего использовать однократно.

Полноценное обеспечение асептики обеспечивается в централизованных стерилизационных отделениях и должно выполняться высококвалифицированными людьми. ЦСО разделяются на 2 зоны: «грязную», или правильнее, приемно- подготовительную, зону и чистую. В первую зону поступают биксы с нестерильным материалом. Персонал ЦСО осматривает их, убеждаясь в их прочности и пригодности, регистрирует, а затем погружает в автоклав и проводит стерилизацию. По окончании цикла отворяют двери автоклава, ведущие в чистую зону, и вынимают простерилизованные биксы. При переходе из приемной зоны в чистую проводится смена халата и мытье рук, одевается стерильная маска. Готовый к работе стерильный материал укладывают на стеллажи в чистой зоне. В чистой зоне проводится контроль качества стерильности.

Факт обсеменения наркозных аппаратов и аппаратов ИВЛ патогенной микрофлорой и возможность перекрестного инфицирования больных очевидны. Основное или сопутствующее заболевание также способствует снижению сопротивляемости организма. Доказано отрицательное влияние продленной ИВЛ на состояние слизистой оболочки дыхательных путей и активность мерцательного эпителия. Перекрестное инфицирование и различные предрасполагающие факторы увеличивают опасность возникновения инфекционного процесса, что определяет необходимость в очистке и обеззараживании наркозно-дыхательной аппаратуры.

При проведении предварительной очистки уменьшается количество патогенных микроорганизмов, удаляются пирогенные вещества, кусочки тканей и органические остатки, которые могут быть токсичными или препятствуют процессу дезинфекции. Для предварительной очистки применяются самые разнообразные моющие средства. Широко используется 0,5% раствор перекиси водорода, который является хорошим окислителем, в сочетании с современными синтетическими моющими средствами (“Новость”, “Прогресс”, “Сульфанол“ и т.п.). Перечисленные средства обладают высокой очищающей способностью, не влияют на качество стекла, металла, пластмасс, резины, легко смываются. При температуре 50 о С их активность значительно возрастает.

Промытые под проточной водой детали аппаратов замачивают в свежеприготовленном моющем растворе в течение 15-20 мин. Затем ватно-марлевыми тампонами моют отдельно каждую деталь. Тампоны используют однократно. Вымытые детали прополаскивают в проточной и ополаскивают в дистиллированной воде. Затем их протирают медицинским спиртом. После этого все предметы должны быть выложены на стерильную простыню и тщательно высушены. Этим методом можно снизить бактериальное обсеменение более чем в тысячу раз.

При последующей дезинфекции учитывается, из какого материала изготовлены детали аппарата. Для термостойких материалов самым простым методом дезинфекции является кипячение в течение 30-35 мин в дистиллированной воде с добавлением гидрокарбоната натрия (20 г/л) или стерилизация в автоклаве водяным паром при 134 °С. Для нетермостойких материалов лучше использовать химическую дезинфекцию с применением одного из следующих средств: 3% раствора перекиси водорода (экспозиция 80 мин), 3% раствора формальдегида (экспозиция 80 мин), или одного из официнальных дезинфицирующих растворов (“Аламинол”, “Лизетол” и т. п.). При обсеменении микобактериями туберкулеза экспозицию увеличивают до 2 ч, а при обсеменении возбудителем столбняка или газовой гангрены - до 4 ч. Температура дезинфицирующих растворов должна быть не ниже 18 °С. После дезинфекции все детали должны быть промыты стерильной дистиллированной водой и высушены. Хранить их следует в стерильных условиях.

Больше всего обсеменению микроорганизмами подвержены те части аппаратов, через которые постоянно проходит выдыхаемая газовая смесь. В результате микробы оседают на всех присоединительных элементах, коннекторах, гофрированных шлангах, которые следует дезинфицировать по описанной методике после каждого использования.

Наружные поверхности аппаратов подлежат ежедневной очистке водой с моющими средствами. Особенно тщательно следует чистить места около кнопок, вентилей, кранов и ручек. Окончательная обработка - протирка салфетками из марли, смоченными 1% раствором хлорамина. Если аппарат использовался у инфицированного больного, то после использования (или ежедневно при продолжительном применении) аппарат незамедлительно должен быть вымыт 3% раствором перекиси водорода с моющим средством, а затем тщательно двукратно обработан 1% раствором хлорамина с интервалом между протираниями 10-15 мин.

Дезинфекция аппаратов в собранном виде осуществляется парами формальдегида. После мытья присоединительных элементов и шлангов аппараты собирают и к тройнику пациента присоединяют емкость с 10% раствором формальдегида. Емкость ставят на электронагревательный прибор и доводят раствор до кипения; при этом пары формальдегида непрерывно поступают в аппарат. Экспозиция составляет 60 мин, а при инфицировании микобактериями туберкулеза - 90 мин. Нейтрализацию паров формальдегида производят, подключая к аппарату тем же способом емкость с 10% раствором аммиака (экспозиция - 30 мин). Затем аппарат продувают воздухом в течение 30-50 мин. Минутный объем вентиляции при обеззараживании аппаратов в собранном виде должен быть не менее 20 л/мин.

Очистка и обеззараживание наркозно-дыхательной аппаратуры требует достаточно много времени и специально выделенного персонала. Описанными методами можно обойтись в хирургических стационарах и отделениях интенсивной терапии малой и средней мощности. В больших многопрофильных хирургических клиниках все большее применение находят специальные дезинфицирующие камеры с большой пропускной способностью. В качестве примера можно привести дезинфицирующую камеру «Aseptor 8800» фирмы Dräger (Германия). Это полностью автоматизированная камера для дезинфекции крупных медицинских аппаратов, включая наркозные аппараты и респираторы. В качестве дезинфицирующего средства служит формальдегид. В каждой камере можно одновременно дезинфицировать 2-5 аппаратов в собранном виде. Одновременно происходит обеззараживание не только поверхности аппаратов, но и внутренних просветов патрубков, шлангов, мешков и т. д. Формальдегид нейтрализуется аммиаком, а затем камера “продувается” воздухом. Таким образом, всего за 40-120 мин один человек может провести обеззараживание нескольких аппаратов.

Контроль за эффективностью качества очистки комплектующих изделий из органических соединений осуществляют путем постановки различных проб (бензидиновая, фенолфталеиновая). Контроль обеззараживания проводят путем смыва с внутренних поверхностей масок, коннекторов, шлангов, воздуховодов и т. п. с последующим посевом на питательные среды на предмет наличия патогенной флоры.

4.5. Инкубаторы и открытые реанимационные системы (ОРС). Поддержание оптимального микроклимата - одно из основных требований при лечении недоношенных детей и новорожденных высокой степени риска. Известно, что даже незначительный холодовой стресс снижает выживаемость младенцев. Поэтому необходимо поддерживать нейтральную температуру окружаещей Среды, при которой для сохранения нормальной температуры тела требуется минимальный уровень потребления кислорода. Ориентировочные значения нейтральной температуры окружающей среды представлены в табл. 4.7.

Для поддержания микроклимата при выхаживании новорожденных используются инкубаторы и открытые реанимационные системы (Рис. 4.20.)

Инкубатор - это закрытая пластиковая камера в которой контролируется и поддерживается температура ребенка, температура и влажность воздуха, концентрация кислорода дыхательной смеси. Кроме того, в инкубаторе имеются устройства и приспособления, обеспечивающие проведение различных лечебно-диагностических манипуляций (взвешивание, изменение положения тела, проведение фототерапи, рентгенографии и др.).

В инкубаторе температура тела обычно поддерживается с помощью системы сервоконтроля, при этом температурный датчик фиксируется на коже ребенка. Идеальным местом фиксации датчика является левое подреберье. Не следут закреплять датчик над ребрами или областью печени, так как это может привести как к охлаждению, так и к перегреванию ребенка.

Система сервоконтроля обеспечивает высокоточное ( 0.1 о С) поддержание температуры, однако она имеет и свои недостатки. Автоматический контроль маскирует изменения температуры тела при инфекционных заболеваниях, а при отклеивании датчика возможно перегревание ребенка.

Современные инкубаторы позволяют достаточно точно контролировать влажность воздуха, что особенно важно при выхаживании недоношенных детей. Так если для новорожденных с массой тела более 1500 г обычно достаточно поддерживать относительную влажность на уровне 50-70%, то для детей с экстремально низкой массой тела необходима влажность порядка 90-95% , что позволяет сократить объем неощутимых потерь жидкости.

При отсутствии нарушений герметичности (закрытые окошки), в инкубаторе может автоматически поддерживаться необходимая ребенку концентрация кислорода в дыхательной смеси. Все установленные параметры микроклимата контролируются встроенной мониторной системой.

Кроме стационарных выпускаются и транспортные модели инкубаторов. Это полностью автономные устройства, имеющие собственные источники энергообеспечения, газоснабжения, аппараты для искусственной и вспомогательной вентиляции легких, инфузионной терапии, мониторные приборы и т.д. Транспортные инкубаторы позволяют минимизироватьопасность транспортировки новорожденных, особенно при перевозке на большие расстояния и в неблагоприятных климатических условиях.

Открытые реанимационные системы (Рис. 4.21.) с источником лучистого тепла имеют свои преимущества - облегчается доступ к ребенку при проведении большого количества лечебно-диагностических манипуляций, уменьшаются колебания температуры и влажности в процессе лечения, как это бывает при частом открывании окошек инкубатора. При выхаживании новорожденных в ОРС нередко используют пластиковый экран или прозрачное пластиковое обдеяло, которые позволяют существенно уменьшить неощутимые потери жидкости у ребенка.